FITC-VB12,FITC标记维生素B12的纯化与质量控制
产品名称:FITC-VB12,FITC标记维生素B12的纯化与质量控制
1. 纯化步骤:多级分离确保高纯度
初步纯化(透析/超滤)
反应体系(FITC与VB12在碳酸盐缓冲液pH 8.5中反应数小时)含未反应FITC、自由VB12及标记产物。通过透析(分子量截断10 kDa)或超滤去除小分子杂质,减少非特异性结合。
示例:使用Sephadex G-25或G-50凝胶过滤层析,基于分子大小差异分离FITC-VB12与未标记组分,收集主峰后冷冻干燥。
高效液相色谱(HPLC)精制
采用反相C18柱,流动相为水-乙腈梯度系统,FITC-VB12与未标记VB12保留时间差异显著,可实现高分辨率分离。纯度要求≥95%,确保后续实验准确性。
纯化产物呈透明至淡黄色,具明显绿色荧光,需避光保存。
2. 质量控制指标:多维度验证确保可靠性
光谱特性验证
紫外-可见光谱:FITC特征峰约495 nm,VB12特征峰约361 nm,两者共存确认标记成功。
荧光光谱:激发波长约495 nm,发射波长约520 nm,荧光量子产率需符合标准(如FITC典型值约0.92),避免光漂白。
结构与分子量验证
质谱(MS):确认标记后分子量变化,区分未标记VB12(分子量约1355 g/mol)与FITC-VB12(分子量增加FITC部分,约1600-1800 g/mol)。
核磁共振(NMR):辅助确认FITC芳香环与VB12核苷结构共存,评估偶联效率及结构完整性。
生物活性验证
细胞摄取实验:通过荧光显微镜或流式细胞术观察FITC-VB12在细胞中的摄取、转运及分布,验证VB12受体结合能力及代谢途径保留。
受体结合实验:利用流式细胞术检测FITC-VB12与细胞表面VB12受体的结合亲和力,确保标记不影响原有生物功能。
温馨提示:仅用于科研,不能用于人体实验!wyh

关于我们:
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